摘要:以刀豆蛋白A (Con A) 刺激的脾淋巴细胞增殖活性及自然杀伤细胞 (NK cell)活性为细胞免疫功能检测指标,观察了阿片受体阻断剂纳洛酮 (Naloxone,NLX) 对大鼠海马内微量注射甲硫脑啡肽所致的免疫功能增强作用的影响。结果发现: (1) 海马内微量注射白细胞介素1 (IL-1) 诱导剂 (细菌内毒素) 脂多糖 (lipopolysaccharide,LPS, 50 ng/1 μl)可降低机体免疫功能。(2) 双侧海马内预先注射甲硫脑啡肽 (M-ENK,浓度: 10 μg/μl)各 1 μl,可阻止脑内LPS降低免疫功能的作用。(3) 脑啡肽的这种作用可被阿片受体阻断剂纳洛酮 (10 μg/1 μl) 阻断。(4) 海马内单纯注射纳洛酮对机体免疫功能也起抑制作用。上述结果提示,海马内脑啡肽对免疫功能的增强作用是通过阿片受体介导的。
关键词: 神经免疫调节;海马;脑啡肽;阿片受体
近年来研究发现,海马结构除了参与情感、情绪、记忆、行为和机体内分泌活动的调节外,在神经免疫调节中也具有重要作用[1]。其中可能有神经肽、多种神经递质和不同细胞因子的参与,而内源性阿片肽,尤其是 M-ENK 被认为起着重要的介导作用。近来我们发现,双侧海马内微量注射脑啡肽可以增强大鼠细胞免疫功能并抑制海马内白细胞介素1α (IL-1α) 基因表达,其机制可能与脑内 IL-1 产物的减少并进而对下丘脑-垂体-肾上腺轴 (HPA轴) 产生抑制效应有关[2,3]。但脑啡肽在中枢调节机体免疫功能中是否主要通过阿片受体起作用尚不清楚。本文在以往工作的基础上,进一步在整体动物观察了阿片受体在中枢内脑啡肽调节细胞免疫功能中的作用。
实验在 Wistar 大鼠进行,雌雄不拘,体重 200~250 g,由本校实验动物中心提供。LPS,M-ENK 及纳洛酮购自 Sigma 公司。10% 水合氯醛 3 ml/kg 腹腔注射麻醉后,在立体定位仪上向动物双侧海马背侧经微量进样器分别注入药物 1 μl。实验分为: 生理盐水对照组;脂多糖组;甲硫脑啡肽加脂多糖组;预先给予纳洛酮再给予脑啡肽加脂多糖组;单纯纳洛酮组。各种药物浓度为: M-ENK 10 μg/μl,LPS 50 ng/μl,纳洛酮 10 μg/μl。每种药物注射均由微操纵器控制在 8~10 min 之间,注射后 30 min 断头处死动物,取脾,分离脾淋巴细胞,观察 Con A 刺激的脾淋巴细胞增殖活性及 NK 细胞活性。所得结果应用 t 检验。
Con A刺激脾淋巴细胞增殖活性的检测:海马内注射药物后 30 min,无菌操作下取脾脏,用淋巴细胞分层液,分离脾脏单个核细胞,调节细胞密度为2×105/ml后,加入96 孔细胞培养板,每孔100 μl,其中Con A刺激组每孔加入5 μg/ml的Con A及含10% 小牛血清的1640培养液各 50 μl。自发增殖对照组每孔仅加入含 10% 小牛血清的1640培养液100 μl。置5% CO2 培养箱37℃培养24 h,以MTT法检测Con A刺激的脾淋巴细胞的增殖活性,用酶标仪测定570 nm波长下的OD值,详见参考文献[2]。为避免淋巴细胞自发增殖作用的干扰,本实验采用Con A刺激脾淋巴细胞净增值为检测指标, 即Con A刺激脾淋巴细胞增殖组与自发增殖对照组的OD值之差。
NK 细胞活性测定:效应细胞制备与分离脾淋巴细胞方法相同,调节细胞密度至5×106/ml备用。靶细胞为活性大于95%的Yac-1细胞。实验前收集Yac-1细胞,分别用Hank′s液及10%小牛血清RPMI 1640液洗涤,调整细胞浓度为5×105/ml,台盼蓝染色检测活细胞数,要求活细胞数大于95%。以LDH稀释法测定NK细胞活性,每分样品同时做3个复孔,按表1所示加样至96孔培养板,置5% CO2培养箱37℃培养 2 h。取出后每孔加入含10%小牛血清的1640液50 μl,混匀离心,每孔中取100 μl 上清液置于另一96孔板对应孔中,32℃预温后,每孔加入100 μl LDH底物液,放置3 min,加1%柠檬酸30 μl终止反应,酶标仪(570 nm)测定OD值。
[[image1]]
表1 NK 细胞活性检测程序
Well |
Yac-1 cells |
Effective cells |
1% NP40 |
New bovine serum+1640 |
Test |
100 μl |
100 μl |
― |
― |
Native release |
100 μl |
― |
― |
100 μl |
Maximum release |
100 μl |
― |
100 μl |
― |
1.海马内注入脑啡肽及脂多糖对 Con A 刺激的脾淋巴细胞增殖反应的影响
生理盐水双侧海马内注射组,Con A刺激脾淋巴细胞增殖反应的净增值(OD570nm)为0.035±0.013 (,下同,n=29);双侧海马内各注射脂多糖50 ng,其净增值为0.024±0.009 (n=29),与盐水对照组比较,差别显著(P<0.05),表明海马内注射LPS对脾淋巴细胞增殖活性具有抑制性影响。甲硫脑啡肽加 LPS 组为 0.047±0.011 (n=29 ), 与 LPS 组比较差别非常显著 (P<0.01),提示脑啡肽可增强脾淋巴细胞增殖活性。海马双侧预先注射纳洛酮,再于海马内分别注射脑啡肽及LPS(表2,第4组) 的净增值仅为0.021±0.009 (n=33),与单纯脑啡肽加 LPS 组 (表2,第3组) 比较差别非常显著(P<0.01),表明纳洛酮可以阻断脑啡肽的作用。
表2 Con A 刺激的脾淋巴细胞增殖反应净增值(OD570nm值)
Group |
Drugs |
Proliferation values |
1 |
Saline |
0.035±0.013 |
2 |
LPS |
0.024±0.009* |
3 |
M-ENK+LPS |
0.047±0.011** |
4 |
NLX+M-ENK+LPS |
0.021±0.009*** |
2.海马内单纯注射纳洛酮对 Con A 刺激的脾淋巴细胞增殖反应的影响
为探讨海马内源性阿片肽对机体细胞免疫功能的影响,于大鼠双侧海马内各注射纳洛酮10 μl,注射后30 min Con A刺激的脾淋巴细胞净增值(OD570nm)为0.095±0.017(n=20),与盐水对照组净增值0.142±0.013 (n=20)比较,差别显著 (P<0.05)。
3.海马内注入脑啡肽及脂多糖对脾 NK 细胞活性的影响
生理盐水双侧海马内注射组,脾NK细胞活性为(20.9±4.4)% (n=18)。双侧海马内各注射脂多糖50 ng,NK活性为(11.8±5.5)% (n=18),与盐水对照组比较,差别非常显著(P<0.01),提示海马内注射LPS对脾NK细胞活性具有抑制性影响;甲硫脑啡肽加 LPS组为(31.1±4.9)% (n=18),与LPS组比较差别非常显著(P<0.01),表明脑啡肽可抑制LPS对脾NK细胞活性的抑制作用。海马双侧预先注射纳洛酮组(表3,第4组),再注入脑啡肽及LPS其活性为(8.5±3.6)% (n=18),与脑啡肽加 LPS 组(表3,第3组)比较,差别非常显著(P<0.01),而与LPS组比较差别不显著(P>0.05),由于纳洛酮可以阻断脑啡肽抑制LPS诱导的免疫下调反应,提示阿片受体可能参与介导脑内脑啡肽的免疫调控作用。
表3 NK 细胞活性
Group |
Drugs |
Activity of NK cells /% |
1 |
Saline |
20.9±4.4 |
2 |
LPS |
11.8±5.5* |
3 |
M-ENK+LPS |
31.1±4.9** |
4 |
NLX+M-ENK+LPS |
8.5±3.6*** |
近年发现,海马结构与机体的免疫系统之间存在相互调控关系。大鼠海马损毁后可增强Con A刺激的胸腺细胞和脾脏细胞增殖反应。此外,海马脑区可参与调节机体的非特异性免疫反应[1,4]。相反的报道认为海马对 HPA 轴有负向调节效应,它对ACTH及皮质酮的分泌有抑制作用[5],最终导致免疫功能的增强。上述矛盾结果说明海马结构对免疫功能的调节作用是复杂的,尚需深入研究。另一方面,许多免疫细胞因子对海马的功能可产生影响,如白细胞介素1,2、肿瘤坏死因子-α、干扰素-α,β可抑制LTP。上皮生长因子,成纤维细胞生长因子等对LTP具有增强作用。此外,白细胞介素1,2,3 等分别对海马神经细胞钙内流、单胺的转化、胆碱能递质活性等产生影响[6]。
脑啡肽具有免疫调节作用[7~9],在体及离体实验已证实,小剂量可增强免疫功能,大剂量则产生抑制效应。在生理条件下,脑啡肽可能参与机体的免疫功能调节,但其作用机制尚不明确。本室研究证实,海马内给予脑啡肽可增强机体细胞免疫功能,并能抑制细菌内毒素LPS所致的海马内白细胞介素1(IL-1)的基因表达。当海马内IL-1基因表达受到抑制时,脑内IL-1合成减少,导致IL-1对HPA轴的激活效应减弱,并通过降低血液中肾上腺皮质激素等的含量增强机体的免疫功能[2,10,11]。
本文从整体水平进行实验,当海马内微量注射细菌内毒素脂多糖时可以抑制Con A刺激的脾淋巴细胞增殖反应及NK细胞活力,而海马内给予甲硫脑啡肽则能阻止脑内脂多糖对脾淋巴细胞增殖反应及NK细胞活力的抑制效应。当机体遭受感染时,中枢的内源性脑啡肽可能参与免疫功能的上调作用。脑啡肽增强免疫效应是否通过阿片受体起作用尚不明确。有研究报道,阿片肽对免疫系统的抗体生成,T-淋巴细胞玫瑰花结及其增殖过程的调节作用有的通过阿片受体,有的并不通过阿片受体。本实验于海马内预先注射阿片受体阻断剂纳洛酮时,脑啡肽的免疫增强作用可被阻断,实验提示在整体条件下海马内脑啡肽对大鼠外周细胞免疫功能的调节是通过胶质细胞或神经细胞上的阿片受体介导的。此外,本实验还观察到双侧海马内单独给予纳洛酮,也可导致机体免疫功能的抑制,表明纳洛酮作用于脑内的阿片受体,使生理状态下中枢的内源性脑啡肽的免疫调节作用受到阻断。上述结果进一步证明,在生理条件下或当机体遭受感染时,阿片受体在中枢免疫调节中的重要作用。
本实验部分工作在实验医学研究中心分子生物学开放实验室进行,谨此致谢。
*国家自然科学基金资助课题(No. 39270250)
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