【摘要】目的 探讨长期静脉注射海洛因对人体细胞免疫功能的影响。方法 以T细胞亚群、白细胞介素-2(IL-2)、白细胞介素-6(IL-6)及一氧化氮(NO)为指标, 检测22例长期静脉注射海洛因患者的细胞免疫功能改变,并与正常人相对照。结果 海洛因依赖者外周血中的CD+4T细胞数(29.1±12.7)较对照组(53.0±10.1)降低,CD+4/CD+8比值倒置,有丝分裂原诱导的IL-2水平(37.8±11.4 μg/L)较对照组(3.8±0.6 μg/L)降低,IL-6水平(55.0±10.4 mg/L)较对照组(2.9±0.5 mg/L)增高,NO含量(71.1±13.3 μmol/L)较对照组(54.6±17.7 μmol/L)增高。结论 长期使用海洛因可抑制人体的细胞免疫功能,辅助性T淋巴细胞1和辅助性T淋巴细胞2之间的功能失调可能是其细胞免疫功能抑制的中介因素之一。
【关键词】海洛因依赖 白细胞介素2 白细胞介素6 一氧化氮 T淋巴细胞亚群
在人类免疫缺陷病毒(HIV)感染流行以前,人们就已观察到海洛因能损害人体免疫功能。近几年又有资料表明,静脉吸毒者HIV感染的机率大于非吸毒者,且海洛因可加速HIV感染发展成获得性免疫缺陷综合征(AIDS)的进程[1]。提示海洛因依赖者的细胞免疫功能可能受损。我们在动物实验的基础上[2],拟对静脉注射海洛因者的外周血T细胞亚群、白细胞介素-2(IL-2)、白细胞介素-6(IL-6)及一氧化氮(NO)的水平进行检测,从CD+4TH细胞分泌的细胞因子间接了解TH1和TH2细胞间的平衡关系,并以此进一步探讨海洛因的免疫机制。
一、对象
1. 患者组:共25例,来自湖南省戒毒所和湖南省浏阳市戒毒所,均符合美国精神障碍诊断与统计手册第4版(DSM-IV)物质所致依赖的诊断标准,有确切的海洛因滥用史,连续静脉注射海洛因≥3个月,吸毒时间≥6个月,既往无重大躯体疾病及肝炎、结核病史,无服用激素类药物治疗史,HIV血清学检测阴性。25例中男18例,女7例,年龄25±4岁,平均吸食海洛因时间25±16月,最近1周海洛因静脉注射量为0.36±0.10 g/d。
2. 对照组:共10名,均为本所医护人员,既往无重大躯体疾病及肝炎、结核病史,无服用激素类药物治疗史,HIV血清学检测阴性,最近6个月没有重大生活事件。10名中男6名,女4名,年龄25±4岁。
两组之间年龄(t=0.20, P>0.05)和性别(χ2=0.72, P>0.05)的差异无显著性。
二、方法
附表 海洛因组与对照组人体细胞免疫功能有关指标的比较(±s)
组别 | 例数 | IL-6 (mg/L) |
IL-2 (μg/L) |
NO (μmol/L) |
CD+4T | CD+8T | CD+4/CD+8 |
海洛因 | 25 | 55.0±10.4 | 37.8±11.4 | 71±13 | 29±13 | 34±11 | 0.88±0.32 |
对照 | 10 | 2.9±0.5 | 3.8±0.6 | 55±18 | 53±10 | 37±5 | 1.49±0.41 |
t值 |
4.16 |
4.19 |
2.65 |
5.8 |
0.84 |
4.18 | |
P值 | <0.01 | <0.01 | <0.05 | <0.05 | >0.05 | <0.01 |
1.主要试剂:人CD+4、CD+8McAb和兔抗鼠IgG荧光抗体(北京医科大学免疫学教研室提供),IL-2试剂盒(中国科学院上海原子核研究所提供),IL-6试剂盒(西安第四军医大学免疫学教研室提供);细胞培养基RPMI 1640 (美国Gibco公司提供);植物血凝素(PHA,广州医药工业研究所提供);淋巴细胞分离液Ficoll-Hypaque (上海试剂一厂生产)。
2.检测指标和方法:(1)外周血淋巴细胞的分离(PBLC分离):采外周血10 ml,肝素抗凝,经Ficoll-Hypaque密度梯度离心2 000 r×20 min,吸取界面PBLC层,经Hank′s液洗2次(1 000 r×10 min),RPMI-1640洗1次(1 000 r×10 min),去上清,加RPMI-1640完全培养基(10%FCS 、1 mm/L谷氨酸胺、青霉素100 U/ml、链霉素100 U /L), 调细胞浓度至2×106/ml, 台盼蓝染色测定细胞生存率大于95%。
3.IL-2的诱生:取2×106/ml PBLC加入24孔培养板,加入PHA至终浓度为200 μg/ml,置37℃、5%CO2培养箱孵育72小时, 离心、收集上清,贮存-40℃待测。
4.IL-6及NO的诱生:取2×106/ml PBLC加入24孔培养板,加入LPS至终浓度为10 ng/ml, 加PHA至终浓度为200 μg/ml,置于37℃,5%CO2培养箱孵育72小时, 离心、收集上清,贮存-40℃待测。
5.CD的检测:采用间接免疫荧光法检测T淋巴细胞亚群CD+4T细胞、CD+8T细胞,原理为抗核抗体与核抗原结合形成抗原抗体复合物,洗涤后再加上羊抗人IgG荧光抗体形成荧光素标记的抗原抗体复合物,此复合物在荧光显微镜下呈现荧光。
6.IL-2的检测:采用放射免疫法检测IL-2的水平,原理为被测抗原(Ag)、放射性同位素标记的抗原(Ag*)和有限量的抗体(Ab)竞争结合,找出Ag~Ag*Ab关系(标准曲线)以后,由不同样品测得之Ag*Ab查标准曲线则可得出其Ag含量。
7.IL-6的检测:采用酶联免疫吸附法测定IL-6 的水平,原理为酶标抗体与抗原特异性结合,酶的催化可使无色的底物显色,颜色的深浅与待测抗原量成正比。
8.NO的测定:参照文献[3]提供的镀铜镉还原法,操作时加以改良。
三、结果
海洛因依赖者CD、CD+4/CD+8比值、IL-2、IL-6、NO水平的检测结果见附表。静注海洛因者CD+4T细胞数低于正常人,CD+8T细胞数与正常人差异无显著性,CD4/CD8比值倒置,CD+4TH1细胞分泌的IL-2水平降低,而CD+4TH2分泌的IL-6水平却高于对照组,外周血培养上清的NO含量高于对照。
四、讨论
本结果显示,海洛因依赖患者CD+4T细胞数显著低于正常对照、CD+8T细胞数两组之间差异无显著性、CD+4/CD+8比值倒置,提示海洛因依赖者细胞免疫功能受损,与多数报道结果一致[4]。另外还显示海洛因对CD+4TH细胞分泌细胞因子IL-2有抑制作用。Jessop等[5]报道吗啡抑制小鼠脾CD+4TH1细胞分泌的IL-2,且抑制程度与剂量呈正相关。也有人发现,成瘾小鼠IL-2、IL-4水平降低,戒断后IL-4恢复正常,但IL-2仍处于低水平状态[6]。国内也有人报道海洛因依赖者IL-2水平低下[4],成瘾小鼠IL-2、IL-6水平均降低[7]。因此可已认为,阿片类药物可使CD+4TH1细胞分泌的IL-2水平降低。
我们发现,海洛因依赖者外周血培养上清中NO含量显著高于正常人。据报道NO与吗啡耐受有关,NO浓度增高能加速吗啡耐受形成[8]。有研究表明,吗啡能通过增高NO水平来抑制小鼠脾细胞增殖[6];NO可能与机体炎症反应有关:NO与超氧阴离子反应形成的羟自由基有较强的毒性,引起微循环障碍和气道粘膜损伤脱落,炎性细胞浸润,血浆渗出,粘膜水肿,上皮细胞受损伤、脱落[9]。因此,海洛因依赖患者高水平的NO可能使其易患呼吸系统疾病。
CD+4TH细胞可以分化为两个主要亚群CD+4TH1、CD+4TH2,CD+4TH1细胞分泌细胞因子IL-2、IFN-γ,CD+4TH2细胞分泌细胞因子IL-4,IL-6,IL-10等,一种TH细胞产生的细胞因子能下调节其他类型的TH细胞[10]。 TH1能被特异性抗原或丝分裂原如Con-A诱导产生大量的NO,而NO能抑制TH1分泌IL-2、IFN-γ,对IL-4的分泌却不产生影响。本结果显示,海洛因依赖者外周血NO水平增高,可能与海洛因诱导巨噬细胞分泌的NO增加有关。此外,还显示海洛因依赖者外周血IL-2水平降低,可能是由于NO反馈性地抑制TH1功能。海洛因依赖者外周血培养上清的IL-6水平高于正常人,也间接反映了TH1和TH2之间的平衡关系遭到了破坏。对感染性疾病而言,若TH2细胞功能增强,机体处于免疫抑制状态,感染易扩散或转为慢性感染;TH1细胞功能占优势,则能迅速清除体内感染或使感染局限,同时产生免疫耐受[10]。海洛因依赖者CD+4TH2细胞功能增强,可能是其对疾病的易感性增加的主要原因。
参考文献:
1 Marion SA, Schechter MT, Weaver MS, et al. Evidence that prior immune dysfunction predisposes to human immunodeficiency virus infection in homosexual men. J AIDS,1989, 2: 178-181.
2 吴玲, 郝伟, 杨德森. 阿片类药物对小鼠细胞免疫的调节及机制. 中国临床心理学杂志,1998, 5:193-196.
3 Guarner C, Soriano G, Tomas A. et al. Increased serum nitrite and nitrate levels in patients with cirrhosis relationship to exdotoxemia. Hepatology, 1993, 18:1139-1142.
4 贾文祥,张文彬,龚其美,等. 海洛因成瘾者免疫功能的研究. 中国免疫学杂志,1997, 1: 58.
5 Jessop JJ, Taploits MS. Effect of high doses of morphine on Con A induced lymphokine production in Vitro. Immunopharmacology,1991, 22: 175-184.
6 Bhargava HN, Thomas PT, Thorat S, et al. Effects of morphine tolerance and abstinence on cellular immune function. Brain Research, 1994, 642 :1-10..
7 卞同华,王晓风,李晓玉. 小鼠的吗啡成瘾及脾细胞免疫功能的变化. 上海免疫学杂志, 1996, 16: 142-145.
8 Babey AM, Kolesnikov Y, Cheng J, et al. Nitric oxide and opioid tolerance. Neuropharmacology, 1994, 33: 1463-1470.
9 Moncads S,Palmer RMJ, Higgs EA. Nitric oxide: physiology, pathophysiology and pharmacology. Pharmacol Rav, 1991, 43:109-116.
10 Thylor-Robinson AW, Liew FY, Severn A, et al. Regulation of the immune response by nitric oxide differentially produced by T helper type 1 and T helper type 2 cells. Eur J Immunol, 1994, 24: 980-984.